GermanWikipedia - /page/entry.mu

Micron Document

<!DOCTYPE html>

<title>Replikationsursprung</title>

</head>

<h1 id="firstHeading" class="firstHeading mw-first-heading"><span class="mw-page-title-main">Replikationsursprung</span></h1>

</header>

</div>

<div id="mw-content-text" class="mw-body-content mw-content-ltr" lang="de" dir="ltr"><div class="mw-content-ltr mw-parser-output" lang="de" dir="ltr"><p>Der Replikationsursprung, englisch <b>origin of replication</b> (<b>ORI</b>) oder kurz <b>origin</b>, auch <i>Origo</i>, ist der Ort auf einem <a href="Desoxyribonukleins%C3%A4ure" title="Desoxyribonukleinsäure">DNA-Molekül</a>, an dem die <a href="Replikation" title="Replikation">Replikation</a> der DNA beginnt.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Der_Replikationsursprung_bei_Bakterien">Der Replikationsursprung bei Bakterien</h2></div>

<p>Der Replikationsursprung bei <a href="Bakterien" title="Bakterien">Bakterien</a> wird <b>ori</b> genannt<sup id="cite_ref-Origins_1-0" class="reference"><a href="#cite_note-Origins-1"><span class="cite-bracket">[</span>1<span class="cite-bracket">]</span></a></sup> und es existiert in der Regel ein Replikationsursprung pro <a href="Bakterienchromosom" title="Bakterienchromosom">Bakterienchromosom</a>. Der bestbeschriebene oriC ist der des Modellorganismus <i><a href="Escherichia_coli" title="Escherichia coli">Escherichia coli</a></i>. Dieser umfasst ca. 245 <a href="Basenpaar" title="Basenpaar">Basenpaare</a> und ist reich an den Basen <a href="Adenin" title="Adenin">Adenin</a> und <a href="Thymin" title="Thymin">Thymin</a>. Der oriC enthält einige repetitive Sequenzen, welche als <a href="Consensussequenz" class="mw-redirect" title="Consensussequenz">Consensussequenz</a> eine Basenfolge von neun Basenpaaren besitzen. Dieser Bereich wird DnaA Box genannt, da dieser von dem Protein DnaA gebunden wird. Die Bindung des Proteins induziert in der DNA eine Krümmung, wodurch die DNA im Bereich der DnaA Box denaturiert. Dies wird zusätzlich ermöglicht durch die bereits erwähnte hohe Anzahl von Adenin und Thymin. Diese Basen bilden untereinander zwei <a href="Wasserstoffbr%C3%BCcken" class="mw-redirect" title="Wasserstoffbrücken">Wasserstoffbrücken</a> aus, im Gegensatz zu Guanin und Cytosin, welche drei H-Brücken untereinander ausbilden (siehe auch <a href="Basenpaar#Watson-Crick-Paarungen" title="Basenpaar">Watson-Crick-Basenpaarung</a>).

DnaA destabilisiert also die Doppelstrangstruktur der DNA durch Spannung, was dazu führt, dass die beiden Stränge sich entwinden. Nach der Entwindung durch DnaA kann DnaB binden. Für diese Bindung wird zusätzlich das Protein DnaC benötigt, welche die Bindung von DnaB an das geschmolzene Stück DNA bewirkt. Bei dem Protein DnaB handelt es sich um eine <a href="Helikase" class="mw-redirect" title="Helikase">Helikase</a>, welche den aufgeschmolzenen Bereich in beide Richtungen vergrößert. DnaC besitzt eine AAA-<a href="ATPase" class="mw-redirect" title="ATPase">ATPase</a>-Domäne, die bei Bindung von ADP und ATP unterschiedliche Bindungseigenschaften aufweist. Es wird postuliert, dass die Bindung von ATP eine stärkere Bindung der DNA verursacht. Außerdem wird beobachtet, dass durch DnaC-ATP die Helikaseaktivität der DnaB inhibiert wird. DnaC-ATP hat also vermutlich die Aufgabe, DnaB an die DNA zu binden, woraufhin die ATPase-Funktion das gebundene ATP zu ADP <a href="Hydrolyse" title="Hydrolyse">hydrolysiert</a> und anschließend die Helikase ihre Arbeit verrichten kann. Zusätzlich scheint der Replikationsursprung auch in Zusammenhang mit dem Zellzyklus der Bakterien zu stehen. Es muss sichergestellt sein, dass das Chromosom nur einmal pro Zellzyklus dupliziert wird. Dies scheint über den <a href="DNA-Methylierung" title="DNA-Methylierung">Methylierungsgrad</a> des oriC kontrolliert zu werden.<sup id="cite_ref-Lehninger_2-0" class="reference"><a href="#cite_note-Lehninger-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Der_Replikationsursprung_bei_Eukaryoten_am_Beispiel_der_Bäckerhefe"><span id="Der_Replikationsursprung_bei_Eukaryoten_am_Beispiel_der_B.C3.A4ckerhefe"></span>Der Replikationsursprung bei Eukaryoten am Beispiel der Bäckerhefe</h2></div>

<p>Bei <a href="Eukaryoten" title="Eukaryoten">Eukaryoten</a> stellt sich die Identifizierung und Beschreibung der Origins schwieriger dar. Die Anzahl der Replikationsursprünge beschränkt sich nicht auf einen einzigen pro Chromosom, sondern kann bei mehreren 100 bis 1000 Ursprüngen liegen. Bei der Bäckerhefe <i><a href="Saccharomyces_cerevisiae" class="mw-redirect" title="Saccharomyces cerevisiae">Saccharomyces cerevisiae</a></i> stellen die Ursprünge nicht-codierende Bereiche von 100 bis 200 Basenpaaren dar, welche als <a href="ARS-Element" title="ARS-Element">ARS</a> (autonomously replicating sequences) bezeichnet werden.<sup id="cite_ref-Lehninger_2-1" class="reference"><a href="#cite_note-Lehninger-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup> Analog zu dem Protein DnaA besitzen Hefen den <i>origin of replication complex</i> (Orc), welcher sich an die ARS-Sequenzen lagern kann. Der MCM (<i>minichromosomal maintenance</i>) Komplex stellt vermutlich die Helikase dar und kann mit DnaB verglichen werden. Auch bei der Bäckerhefe gibt es einen „Ladekomplex“ (vergleichbar DnaC), welcher die Bindung von MCM vollführt. Die Interaktionen zwischen den einzelnen Komponenten scheinen jedoch vielfältiger. Beispielsweise sind möglicherweise Interaktionen mit ORC zusätzlich für die Bindung der Helikase notwendig. Außerdem scheinen auch hier wieder ATPase-Funktionen der einzelnen Komponenten die Bindungseigenschaften zu beeinflussen.

Aufgrund der Vielfältigkeit der Interaktionen und Initiationskomplex-Komponenten ist es hilfreich, den Ablauf in <i>S. Cerevisiae</i> mit <i>E. Coli</i> zu vergleichen. Es handelt sich aber um <a href="Homologie_(Biologie)" title="Homologie (Biologie)">analog</a> entwickelte Abläufe, die sich im Detail voneinander unterscheiden und molekular unterschiedlich arbeiten.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Replikation_in_höheren_Eukaryoten"><span id="Replikation_in_h.C3.B6heren_Eukaryoten"></span>Replikation in höheren Eukaryoten</h2></div>

<p>Bei höheren Eukaryoten, wie z. B. Insekten oder Wirbeltieren, befindet sich die Forschung vielfach noch auf der Ebene der Identifikation der einzelnen Komponenten. Außerdem ist es schwieriger die Origins zu erkennen, da bisher keine Consensussequenzen, oder spezielle nicht-codierende Bereich gefunden wurden, bzw. keine generellen Aussagen über das „Aussehen“ getroffen werden können. Da es bereits bei der Bäckerhefe Anzeichen von <a href="Epigenetik" title="Epigenetik">epigenetischen</a> Mechanismen gibt, kann man davon ausgehen, dass bei höher entwickelten Organismen der Ablauf nochmals komplizierter ist.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Replikation_in_Archaeen">Replikation in Archaeen</h2></div>

<p>Hier befindet sich die Forschung noch im Beginn, <a href="Archaeen" title="Archaeen">Archaeen</a> könnten jedoch einen Ansatzpunkt darstellen, den Ablauf bei Eukaryoten besser zu verstehen. Diese besitzen relativ einfach strukturierte Chromosomen, die denen der Bakterien ähneln. Die molekularen Mechanismen der Informationsprozessierung aus DNA gleichen jedoch stärker denen der Eukaryoten. Zum Teil wurden bereits Homologien zu Proteinen der Hefen gefunden, wodurch die Hoffnung begründet ist, die Archaeen als einfache Modellorganismen für Eukaryoten verwenden zu können.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Siehe_auch">Siehe auch</h2></div>

<ul><li><a href="ARS-Element" title="ARS-Element">ARS-Element</a> autonom replizierende Sequenz</li>

<li><a href="Okazaki-Fragment" title="Okazaki-Fragment">Okazaki-Fragment</a></li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Einzelnachweise">Einzelnachweise</h2></div>

<li id="cite_note-Origins-1"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-Origins_1-0">↑</a></span> <span class="reference-text">Origins of DNA replication in the three domains of life, N. P. Robinson & S. Bell, <a href="FEBS_Journal" title="FEBS Journal">FEBS Journal</a> 272 (2005), 3757–3766</span>

</li>

<li id="cite_note-Lehninger-2"><span class="mw-cite-backlink">↑ <sup><a href="#cite_ref-Lehninger_2-0">a</a></sup> <sup><a href="#cite_ref-Lehninger_2-1">b</a></sup></span> <span class="reference-text">Nelson, Cox: <i>Lehninger Biochemie</i> 3. Auflage, Springer-Verlag, Berlin 2001. ISBN 3-540-41813-X</span>

</li>

</ol>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Weblinks">Weblinks</h2></div>

<ul><li><a rel="nofollow" class="external text" href="http://www.oridb.org">The DNA Replication Origin Database, OriDB</a></li></ul></div><div><div class="zim-footer">

Dieser Artikel wurde von <a class="external text" title="Zuletzt bearbeitet am 2021-01-07" href="https://de.wikipedia.org/wiki/?title=Replikationsursprung&oldid=207371169">Wikipedia</a> herausgegeben. Der Text ist unter <a class="external text" href="https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0/deed.de">Creative Commons Attribution-Share Alike 4.0</a> verfügbar, sofern nicht anders angegeben. Für die Mediendateien können zusätzliche Bedingungen gelten.

</div>

</div></div>

</div>

</main>

</div>

</body></html>